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蛋白質提純的注意事項和常見問題有什么?

更新時間:2023-09-22點擊次數:1577

在進行任何一種蛋白質純化的時候,都要時刻注意維護它的穩定性,保護它的活性,那么你知道蛋白質提純的注意事項和常見問題有什么嗎?讓我們一起來看看吧!

一、注意事項:

1、操作盡可能置于冰上或者在冷庫內進行。

2、濃度不要太稀,蛋白濃度維持在μg/mL~mg/mL。

3、選擇合適的pH,除非是進行聚焦層析,所使用的緩沖溶液pH避免與pI相同,防止蛋白質的沉淀。

4、使用蛋白酶抑制劑,防止蛋白酶對目標蛋白的降解;在純化細胞中的蛋白質時,加入DNA酶,降解DNA,防止DNA對蛋白的污染。

5、避免樣品反復凍融和劇烈攪動,以防蛋白質的變性。

6、緩沖溶液成分盡量模擬細胞內環境。

7、在緩沖溶液中加入0.1~1mmol/LDTT(二硫蘇糖醇)(或β-巰基乙醇),防止蛋白質的氧化。

8、加1~10mmol/LEDTA金屬螯合劑,防止重金屬對目標蛋白的破壞。

9、使用滅菌溶液,防止微生物生長。

二、常見問題:

1、通過 His 標簽純化的蛋白,雜帶比較多,如何改進?

(1)如果純化的是上清,蛋白酶會部分降解目的蛋白,可通過加多種蛋白酶抑制劑改進。

(2)可提高雜蛋白與鎳柱結合起始咪唑濃度,以降低雜蛋白與鎳柱的親和力。

(3)雜蛋白和目的蛋白結合,可通過超聲前加入去垢劑的方式消除(1%-2%Tritonx-100)。

2、鎳柱使用中出現棕色的原因

(1)柱子發生堵塞,可能是樣品中細胞碎片或其他雜顆粒所致,所以樣品一定要高速離心,并過0.22或者0.45的膜。

(2)上清純化時,蛋白發生變性,有絮狀物產生,趕緊加入 1-2mM DTT (上清樣品處理要在冰浴中進行),還不行加尿素變性,使其在變形環境下。

(3)樣品處理時的料液比不要太小,否則黏度大,或者導致蛋白析出或變性,料液比要在 1/10-1/15 之間較適宜。

3、純化過程中蛋白出現了渾濁應如何處理?

(1)出現渾濁,說明蛋白處在不穩定的環境中或者自身就不穩定,所以要檢查緩沖體系是否正確,環境是否低溫,或在緩沖液中加入還原劑 DTT。

(2)加入肌氨酸鈉,迅速使蛋白變性,消除渾濁現象。

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